Infrastruktureinrichtungen und Anlagen im Helmholtz-Zentrum München, HMGU
Das Institut für Biochemische Pflanzenpathologie (BIOP) des Helmholtz Zentrum München erforscht natürliche Abwehrmechanismen von Pflanzen, ihr Wachstum, ihre Fitness und die Nutzung vorhandener Ressourcen (z.B. Wasser), insbesondere in Abhängigkeit von Umweltfaktoren wie etwa Veränderungen im Klima. Ein Hauptaugenmerk liegt auf der Erforschung molekularer Mechanismen, welche für die Anpassung der Pflanzen an abiotische und biotische Einflüsse zuständig sind. Die integrierte Forschungseinheit Experimentelle Umweltsimulation (EUS) betreibt eine Forschungsplattform für kontrollierte Umweltsimulation durch den Betrieb von Expositionskammern, einem Sonnensimulator und einem Forschungsgewächshaus. Der wissenschaftliche Fokus von EUS liegt in der Identifizierung von leicht flüchtigen organischen Verbindungen (Volatile Organic Compounds, VOCs) aus Pflanzen und der Aufklärung ihrer Bedeutung für die Pflanzenabwehr und die Stressantwort.
BIOP ist ein Mitglied des Europäischen Pflanzen Phänotypisierungs Netzwerks EPPN und stellt auch in diesem Rahmen bereits bestehende Anlagen zur Verfügung. Im Rahmen von DPPN werden neue Forschungseinheiten aufgebaut, welche die Phänotypisierung von Wurzel und Spross, sowie von Pflanze-Pathogen Interaktionen ermöglichen werden. Dabei sollen, abgesehen von Wachstums- und Entwicklungsphänotypen, auch VOC-Emissionen und intrazelluläre Fluoreszenzmarker für Pflanze-Pathogen-Interaktionen in hoher (zeitlicher/räumlicher) Auflösung in mittlerem bis hohem Durchsatz erforscht werden.
Für weitere Informationen und Zugang zu den Einrichtungen wenden Sie sich bitte an folgende Personen:
Uta von Rad, Dr. v.rad@helmholtz-muenchen.de oder
Stephan Dräxl, Dr. stephan.draexl@helmholtz-muenchen.de
Die verschiedenen Infrastruktureinrichtungen sind in folgende Gruppen eingeteilt:
Technologie Plattform Patho
Plant Volatiles | |
---|---|
nähere Infos | |
Analysebereich | Einzelne Pflanzen / Matrix |
Standort der Anlage | Anzuchtkammern / stationär |
Auswahl | Einzelne Pflanzen |
Pflanzengröße/Spezies | Bis zu 70 cm Höhe / Diverse |
Eigenschaften und Parameter | Emissionsprofile von leicht flüchtigen organischen Bestandteilen (VOCs) und Photosynthese |
Methode | Sammeln (Luft-Sampling-System) und Analyse (PTR-ToF-MS) von Pflanzenemissionen |
Kapazität/Durchsatz | 48 Luftsammelküvetten parallel in Verwendung / Tag |
Zeitplan | demnächst |
High-throughput Confocal microscopy |
Laser scanning confocal microscope | |
---|---|---|
nähere Infos | -nähere Infos folgen in Kürze- | |
Analysebereich | Organ | Organ |
Standort der Anlage | stationär | |
Auswahl | Einzelne Pflanzen | Einzelne Pflanzen |
Pflanzengröße/Spezies | Setzlinge (bis 2 Wochen)/kleine Pflanzen | kleine Versuchspflanzen und Setzlinge |
Eigenschaften und Parameter | Automatisierte Phänotypisierung von mit Fluoreszenz markierten Pflanzen im 96-well Format | Detaillierte Analyse der intrazellulären oder gewebespezifischen Signalisierungstransportwege |
Methode | Fluoreszenzmikroskopie | |
Kapazität/Durchsatz | Hoher Durchsatz | Einzelanwendung |
Zeitplan | in Vorbereitung | in Vorbereitung |
Technologie Plattform Root
Root Phenotyping | |
---|---|
-nähere Infos folgen in Kürze- | |
Analysebereich | Organ |
Standort der Anlage | |
Auswahl | Einzelne Pflanzen |
Pflanzengröße/Spezies | kleine Versuchspflanzen bis hin zu ausgewachsenen Getreidepflanzen |
Eigenschaften und Parameter | Automatisierte Phänotypisierung der Wurzelarchitektur |
Methode | |
Kapazität/Durchsatz | hoher Durchsatz |
Zeitplan | in Vorbereitung |
Technologie Plattform Root/Shoot
Sensor-to-Plant | |
---|---|
-nähere Infos folgen in Kürze- | |
Analysebereich | Organ |
Auswahl | Einzelne Pflanzen |
Pflanzengröße/Spezies | kleine Versuchspflanzen bis hin zu ausgewachsenen Getreidepflanzen |
Eigenschaften und Parameter | Automatisierte Phänotypisierung von Spross- und Wurzelarchitektur gleichzeitig |
Methode | |
Kapazität/Durchsatz | hoher Durchsatz |
Zeitplan | in Vorbereitung |